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如何体内进行心肌疾病相关基因的功能研究?这包含疾病模型的选择、基因转导病毒工具的选择、以及病毒注射方式的选择等几个关键问题。分述如下:
一、心肌功能研究常用的动物模型
1、在体动物模型(in vivo):
心肌相关研究模型包括:
① 心力衰竭——主动脉弓缩窄心衰模型(TAC),通过结扎冠状动脉前降支或前降支分支使主动脉口径缩小,以加重心脏后负荷, 在心肌肥厚模型形成后,可发展为心力衰竭。
② 心肌梗死——心肌缺血再灌注,心脏冠脉左前降支(LAD) 结扎使血管缺血一段时间,再松开使血液回流,造成再灌注二次损伤。
2、更新微信推送数据离体模型:Langendorff 心脏离体灌流模型
3、体外细胞模型:
① 细胞种类:新生鼠心肌细胞(1-3day);成年心肌细胞(Langendroff 分离,分离难度大,培养困难);H9C2 细胞系。
② 细胞造模:模拟缺血液,模拟缺氧环境。
汉恒心肌研究技术团队有完善的心肌细胞分离培养(包括新生和成年)经验。
具体造模方法详询汉恒生物。
二、心肌研究的病毒工具选择
目前主流的三大病毒载体:慢病毒、腺病毒、AAV(腺相关病毒)。对于心肌研究来说,AAV 病毒载体是最适合的研究工具。
表 1. 心肌功能研究病毒工具比较
慢病毒:病毒滴度较低,较少用于动物活体实验;心脏不易被感染,因此不能用来感染心脏。
腺病毒:载体容量最大,可达 6kb,感染 3 天后即可观察;免疫原性高,必须原位注射才可以;分子较大,会被体内防御系统识别进而清除,因此表达周期只有 2~3 周。一般目的基因比较大,试验周期短,才会选择此种方法。
腺相关病毒:很小,易于扩散,具有均一性;这一特点也使得不易被免疫系统发现,免疫原性低,安全性高,能持续在体内表达 3~6 个月,具有长效性;而且可以选择特殊血清型 AAV1/6/9 感染,相对特异性强;可以直接静脉;主流杂志一致认可,可提高文章分值档次,大文章必备。
图 1. 不同血清型 AAV 感染小鼠心脏组织。cTnT-EGFP 包装进 AAV 衣壳血清型 2,1,6,8,9 后分别通过颈静脉注射 1 周龄小鼠,4 周后检测小鼠心脏组织 EGFP 荧光(Gene Therapy. January,2011)。
汉恒心肌特异性 AAV --在体心肌的最佳基因载体
目前,AAV9 是公认的高效特异性靶向心脏表达的病毒载体血清型(图 1)。尽管 AAV8 的感染效果也不错,但是没有 AAV9 的扩散性好。无论是 AAV1/6/9 中的哪种血清型,都不能在心脏部位特异性表达。除了心脏外,AAV1 还可能在肌肉、骨骼肌、神经组织表达;AAV6 还可以在肺部表达;AAV9 还可以在肌肉、中枢神经、肺、肝脏表达。
汉恒心肌特异性 AAV,通过 AAV9,优选心肌特异性启动子和其他分子元件,实现心肌的高效基因转导:
① 高感染表达率:汉恒强启动子载体 AAV9,通过静脉注射,高效感染心肌,特异性上略差。
② 高心肌特异性 AAV:汉恒对 cTNT,cTNI,alpha-MHC,MLC2v 等启动子不同片段进行不同长短体的严筛,确定 cTNT 特异性启动子,高特异的表达与心脏。心脏中起始 cTNT 正常转录的元件较多,因此在心脏中相对表达量较其他部位高出很多。这里的表达是相对的,也就是说其他部位也可能会表达目的基因,但是跟心脏的表达量相比,可以忽略不计(图 2)。
图 2. 心肌特异性启动子表达效果图。小动物活体成像表明 cTNT 主要介导基因在心脏表达,虽然在肝脏中有些微渗漏。
③ 对实验要求极其严格(苛刻):载体含有 Cre 依赖的 DIO 元件。DIO 原件的载体只有在 Cre 动物模型中才会表达。因此,只需用心脏 Cre 敲入动物,含有 DIO 元件的载体便能在心脏特异表达。
三、病毒注射方式
对于心脏来说,慢病毒无法发挥作用;腺病毒能原位注射;而腺相关病毒适合原位注射和系统性注射,如尾静脉注射(带有特异性启动子)和眼眶静脉注射(带有特异性启动子)。
① 心肌原位注射:直接注射是通过注射器或类似装置直接注入心脏肌肉组织。该载体通过间质空间获得心肌细胞,并通过特定的载体机制进入,在转导方面更具地方性。有些实验要求特异性比较高,只能在心脏处观察,其他部位是不可以观察到病毒表达的。那么这种情况下我们建议大家采用原位多点注射方式。因为心肌细胞的分裂能力比较差,所以采用此种方式注射的病毒不会扩散到其他部位。但是这种方法有一个弊端,需要采用开膛手术,对操作者要求比较高,而且动物伤害性比较大(图 3)。
图 3. 小鼠心脏原位病毒注射与效果示意图。左图是通过开胸对心脏进行原位病毒注射。右图是原位注射 AAV-GFP 3 周后效果图。通常采取原位多点注射的方式。
② 尾静脉注射:从动物尾部的静脉注射病毒,以输送到心脏和整个循环,包括冠状循环。该载体通过心脏毛细血管网进入大多数心肌细胞,是最简单的一种注射方式(图 4)。
图 4. 尾静脉注射 AAV 与心肌感染效果示意图
③眼眶静脉(temporal vein)注射:有些动物比较小,比如新生小鼠,尾静脉太细致使无法正常进行尾静脉注射。通过眼眶静脉注射同样可以传输到全身(图 5)。
图 5. 眼眶静脉注射示意图
对于更小的动物,如新生鼠可以通过眼眶静脉注射。效果跟尾静脉类似。
此外,对于血管相关疾病如动脉粥样硬化、高血压等及其引发的内皮损伤等功能研究通常也可以通过 AAV 来实现。如血管外膜 AAV 基因转导(图 6)。
图 6. 血管外膜 AAV 基因转导方法
血管剥离,然后用 matrigel 包裹,并涂抹适量 AAV 使之扩散感染到血管外膜。图中结果表明 AAV5 效果较好。对于血管内皮则不适用这一方法。
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